肺癌研究黄金搭档——自发肿瘤小鼠和肺癌移植瘤小鼠如何选择?哪款更合适?
Illustration: J Natl Cancer Cent. 2024, 4(1): page
1. 肺癌的类型与分期
1.1 肺癌的类型
肺癌在医学分类上主要分为小细胞肺癌(SCLC)和非小细胞肺癌(NSCLC)两大类。其中非小细胞肺癌是肺癌的主要类型,约占肺癌总诊断病例的80%~85%。[11]
Illustration: Merit Medical
1.2 肺癌的分期
非小细胞癌症分期付款对正确如何判断非小细胞癌症的最新进展具体情况和发展标准至关关键,是医学大夫确定特性化的治疗方案怎么写与考评的人愈后具体情况的关键基本原则。T(原发肿瘤):主要描述肿瘤的大小和所在位置,分期从T1到T4。T后的数字越大,表明肿瘤体积越大或位置越靠近中央气道,对周围组织的侵袭越严重。
N(淋巴结转移):用于反映肿瘤是否已扩散到附近的淋巴结,分期从N0到N3。数字越大,意味着淋巴结转移的范围越广,患者的预后情况越差。
M(远处转移):用于判断肿瘤是否扩散到身体其他部位,如肝、脑、骨等,分期从M0到M1。一旦出现远处转移,即为晚期肺癌,治疗难度显著增加。
2. 肺癌的药物治疗
随之临床医学的反复增加,肺癌爱美者爱美者的医疗科技手段渐趋充沛层次性。现在的我们,拿来过去的的放疗和肿瘤化疗外,靶向療法医疗、免疫细胞医疗等当下療法也为肺癌爱美者爱美者爱美者给我们了更高我希望。[5,8]3. 肺癌相关动物模型介绍
在癌症调查、治癌用量开发、监床前科学实验步骤中,哺乳生物模特工具对于那些用量确认发挥做用着不能够或缺的至关重要做用。这些为深入学习探求癌症的发生了原则、转出规律性,、淘汰评价指标治癌用量的的疗效,提高了强强大的科学实验斜撑。共性有所差异的监床调查目的性,合理安排选泽好的哺乳生物模特工具,虽然是所决定调查得失的至关重要问题。下方,我们大家来清楚一段时间癌症调查经常用的小鼠模特工具。3.1 肺癌自发肿瘤小鼠模型
肺癌自发肿瘤小鼠模型是借助基因工程技术,使小鼠在自然状态下自发形成肺部肿瘤的模型。该模型无需化学诱导或细胞移植过程,通过模拟特定基因突变或异常表达,能够高度还原人类肺癌发展过程,具备较高的生物学相似性和病理真实性。
KRAS突变
B6-KS小鼠模型
KS小鼠14w时肝癌比较严重(注:灰色上箭头显示灯癌肿细胞核)
B6-KPS小鼠模型
EGFR转变
B6-hEGFR-T790M-C797S-L858R小鼠模型
Trp53、Rb突变
3.2 肺癌移植瘤小鼠模型
小鼠迁移瘤模式是研究分析肝癌的核心方式,为渗入明白肝癌的發生规则、开始肿瘤药物建立及完成治疗效果评估报告格式带来了有劲支持力。异种移植瘤模型
① 人源肿瘤组织异种移植模型(PDX 模型)
PDX 模式是将的人近视手术肺部良性恶性肺部肿瘤切除的肺部良性恶性肺部肿瘤聚集应该人授到免疫性障碍小鼠身身体部,使其在小鼠身身体部成长演变成肺部良性恶性肺部肿瘤。该模式也应该尽量地继承的人肺部良性恶性肺部肿瘤聚集的原状病理报告特证和隐性基因各式各样性,也应该较高虚拟地球肺肺部肿瘤的怪物学功能。在口服药治療治療选择多方面,PDX模式能用于评价环保型防癌口服药治療治療的治療作用,精准预测口服药治療治療在的人身身体部的反馈。如,论述工人应该将多类不一样类的肺肺部肿瘤 PDX模式好友分组,各是提供给不一样的口服药治療治療实施治療,能够 会比较各组小鼠肺部良性恶性肺部肿瘤的成长阻止状况,选择出对当前肺肺部肿瘤类有着积极治療作用的口服药治療治療。集萃ob电竞官网入口 专注于于带动癌肿有目的药学学习还有多元化制剂的开发,引入了一般包括小平面瘤与静脉血瘤多个分类的PDX小动物类别影视教学影视资源库。中间,1.肺腺癌涉及到的的PDX影视影视资源遍及了非小人体体细胞1.肺腺癌还有小人体体细胞1.肺腺癌从之前到肺麟癌的每个阶段中,,就能够有效具备满足成果转化工作员的学习诉求。分型 | 编号 | 分期 |
鳞癌 | LC00256 | ⅠA3(pT1 cN0 cM0) |
LC00802 | pT2N0M0 | |
LC00811 | pT2N0M0 | |
LC00813 | T1cN0M0 | |
LC00816 | T2N0M0 | |
LC00873 | IB(ypT2N0M0) | |
LC00904 | I | |
LC00909 | IIIA(T4N0M0) | |
LC00915 | IB(pT2aN0M0) | |
LC00815 | ⅢB(pT3N2M0) | |
腺癌 | LC00143 | ⅡA(T2b N0 cM0) |
LC00780 | ⅠA3(T1bN0M0) | |
LC00784 | ⅢA(pT3N1M0) | |
LC00785 | ⅠA2(pT1bN0M0) | |
LC00800 | ⅡB(pT1cN1M0) | |
LC00805 | ⅠA1(pT1aN0M0) | |
LC00853 | IB(pT2aN0M0) | |
LC00855 | IA2(T1bNOMO) | |
LC00858 | IB(pT1bN1M0) | |
LC00863 | IA3(pT1cNOMO) | |
LC00869 | IB(pT2NOMO) | |
LC00886 | IIB(pT2aN1MO) | |
LC00889 | IA3(pT1cN0M0) | |
LC00893 | IA2(pT1bNOMO) | |
LC00901 | IIIB(pT3N2bM0) | |
LC00916 | IB(pT2aN0M0) | |
LC00818 | ⅠB(pT2aN0M0) | |
LC00862 | IA3(pT1cNOMO) | |
小细胞癌 | LC00791 | limited-stage |
LC00801 | ⅢA(pT2aN2M0) | |
LC00842 | ⅡB(T2aN1M0) | |
LC00861 | IB(pT2aN0M0) | |
LC00872 | IIIA(T1bN2bM0) | |
LC00824 | pT1cN0M0 | |
癌肉瘤 | LC00846 | IIIA(pT4N0M0) |
腺鳞癌 | LC00910 | IA3(pT1cN0M0) |
② 细胞系来源的异种移植瘤模型(CDX 模型)
CDX 模式是将人类文明肺腺癌体神经元系疫苗打疫苗到小鼠身体内部,使其萌发的达成良性良性肉瘤。在这种的方法工作中相对而言简易,成本费较低,且体神经元系因素比较稳定,非常适合去大经营规模的用量挑选和制度化设计工作中。举例子,A549体神经元系就是一种选用的非小体神经元肺腺癌体神经元系,设计职工可将A549体神经元疫苗打疫苗到小鼠肉里,待良性良性肉瘤达成后,争取不一样的的用量整理,留意用量对良性良性肉瘤萌发的的影晌,可以评诂用量的抗良性良性肉瘤吸附性。集萃ob电竞官网入口 针对于癌肿医药学的实验和中药開發的实际上的市场的需求,实现了全面的人源癌肿内部能源网上平台。进来,非小人体组织癌细胞核肺癌对应的CDX内部系能源包涵了天然的型内部系、荧光内部系、耐药肺结核内部系等,才可以敏锐满意业各式各样化的的实验市场的需求。产品编号 | 产品名称 | 产品类别 | 细胞来源 | 成瘤数据 |
C000021 | A549 | 野生型细胞系 | 人源 | 有 |
C000022 | Calu-3 | 野生型细胞系 | 人源 | 有 |
C000023 | DMS 53 | 野生型细胞系 | 人源 | 有 |
C000024 | HCC827 | 野生型细胞系 | 人源 | 有 |
C000025 | NCI-H1666 | 野生型细胞系 | 人源 | 无 |
C000026 | NCI-H1703 | 野生型细胞系 | 人源 | 有 |
C000027 | NCI-H1755 | 野生型细胞系 | 人源 | 无 |
C000028 | NCI-H1975 | 野生型细胞系 | 人源 | 有 |
C000029 | NCI-H2122 | 野生型细胞系 | 人源 | 有 |
C000030 | NCI-H226 | 野生型细胞系 | 人源 | 有 |
C000031 | NCI-H292 | 野生型细胞系 | 人源 | 有 |
C000032 | NCI-H358 | 野生型细胞系 | 人源 | 有 |
C000033 | NCI-H446 | 野生型细胞系 | 人源 | 有 |
C000034 | NCI-H460 | 野生型细胞系 | 人源 | 有 |
C000035 | NCI-H526 | 野生型细胞系 | 人源 | 有 |
C000036 | NCI-H727 | 野生型细胞系 | 人源 | 无 |
C000037 | NCI-H82 | 野生型细胞系 | 人源 | 有 |
C000038 | NCI-H441 | 野生型细胞系 | 人源 | 有 |
C000039 | NCI-H69 | 野生型细胞系 | 人源 | 有 |
C000040 | NCI-H1650 | 野生型细胞系 | 人源 | 有 |
C000041 | SHP-77 | 野生型细胞系 | 人源 | 有 |
C000042 | NCI-H1299 | 野生型细胞系 | 人源 | 有 |
C000043 | PC-9 | 野生型细胞系 | 人源 | 有 |
C000044 | NCl-H520 | 野生型细胞系 | 人源 | 无 |
C000045 | NCI-H2228[H2228;H-2228] | 野生型细胞系 | 人源 | 有 |
C000046 | SK-MES-1 | 野生型细胞系 | 人源 | 无 |
C000047 | NCI-H838 | 野生型细胞系 | 人源 | 无 |
C000048 | NCI-H1568 [H1568] | 野生型细胞系 | 人源 | 有 |
C000049 | NCI-H209 [H209] | 野生型细胞系 | 人源 | 有 |
C000050 | EBC-1 | 野生型细胞系 | 人源 | 有 |
C000147 | Calu-6 | 野生型细胞系 | 人源 | 有 |
C000188 | NCI-H2170 | 野生型细胞系 | 人源 | 有 |
C000189 | NCI-H1975 | 野生型细胞系 | 人源 | 有 |
C000200 | DV-90 | 野生型细胞系 | 人源 | 有 |
C000209 | SW900 | 野生型细胞系 | 人源 | 无 |
C000215 | NCI-H1944 | 野生型细胞系 | 人源 | 无 |
C000216 | HCC-44 | 野生型细胞系 | 人源 | 无 |
C000217 | NCI-H2073 | 野生型细胞系 | 人源 | 无 |
C300020 | A549-Luc | 荧光细胞系 | 人源 | 有 |
C300021 | NCI-H82-Luc | 荧光细胞系 | 人源 | 有 |
C300057 | NCI-H2122-Luc-EGFP | 荧光细胞系 | 人源 | 有 |
C300058 | NCI-H1975-Luc-EGFP | 荧光细胞系 | 人源 | 有 |
C300059 | PC-9-Luc-EGFP | 荧光细胞系 | 人源 | 有 |
C400003 | NCI-H1975(L858R/T790M+C797S)-OSI-R | 耐药细胞系 | 人源 | 无 |
C400004 | NCI-H1975-OSI-R | 耐药细胞系 | 人源 | 无 |
有些CDX细胞膜系成瘤数值以下:
同系移植瘤模型
产品编号 | 产品名称 | 产品类别 | 细胞来源 | 成瘤数据 | 成瘤宿主小鼠 | 细胞基因修饰类型 |
C100016 | LLC1 | 野生型细胞系 | 鼠源 | 有 | B6 | / |
C100017 | KLN 205 | 野生型细胞系 | 鼠源 | 无 | / | / |
C200096 | LLC-1-hSiglec15 | 人源化细胞系 | 鼠源 | 有 | B6-hSiglec15 | hSiglec15 (Tg)-mSiglec15(KO) |
C200141 | LLC-1-hPDL1 | 人源化细胞系 | 鼠源 | 有 | B6 | hPDL1(Tg)-mPDL1(KO) |
C200157 | LLC-1-hCD38 | 人源化细胞系 | 鼠源 | 无 | / | hCD38(KI)-mCD38(KO) |
C300043 | LLC1-Luc | 荧光细胞系 | 鼠源 | 有 | B6 | / |
同系移植瘤宿主资源:肺癌药物靶点人源化小鼠模型
靶点 | 产品编号 | 产品名称 | 状态 |
HER2 | T064739 | BALB/c-hCD3EDG/hHER2 | 胚胎冻存 |
T057039 | BALB/c-hHER2-Tg | 活体 | |
T009819 | BALB/c-hHER2 | 活体 | |
EGFR | T064737 | BALB/c-hCD3EDG/hEGFR | 活体 |
T056764 | BALB/c-hEGFR-T790M | 胚胎冻存 | |
T009817 | BALB/c-hEGFR | 活体 | |
T007732 | B6-hEGFR(Exon19 del) | 胚胎冻存 | |
PD1 | T064918 | BALB/c-hPD1/hSIRPa-V2 | 活体 |
T003095 | B6-hPD1 | 活体 | |
T002726 | BALB/c-hPD1 | 活体 | |
PD1,PD-L1 | T059704 | BALB/c-hPD1/hPDL1/hTIGIT/hPVRIG-V2 | 活体 |
T054841 | BALB/c-hPD1/PDL1/hTIGIT/hCD226 | 活体 | |
T050195 | BALB/c-hPD1/hPDL1/hCD47/hSIRPA | 活体 | |
T037004 | BALB/c-hPD1/hPDL1/hTIGIT | 活体 | |
T036974 | BALB/c-hPD1/hPDL1/hCD39 | 活体 | |
T036652 | BALB/c-hPD1/hPDL1/hCD73 | 活体 | |
T004025 | BALB/c-hPD1/hPDL1 | 活体 | |
T004022 | B6-hPD1/hPDL1 | 活体 | |
PD-L1 | T003455 | B6-hPDL1 | 活体 |
T003260 | BALB/c-hPDL1 | 胚胎冻存 | |
PD1,CTLA4 | T003826 | B6-hPD1/hCTLA4 | 活体 |
T003720 | BALB/c-hPD1/hCTLA4 | 活体 | |
CTLA4 | T055241 | BALB/c-hTIGIT/hCTLA4 | 胚胎冻存 |
T003362 | B6-hCTLA4 | 胚胎冻存 | |
T003361 | BALB/c-hCTLA4 | 胚胎冻存 | |
VEGFA | T036939 | B6-Rho-hVEGFA-Tg | 活体 |
T017803 | BALB/c-hVEGFA | 胚胎冻存 | |
FLT3 | T054196 | BALB/c-hFLT3 | 胚胎冻存 |
DLL3 | T069568 | B6-hDLL3 | 研发中 |
T069567 | BALB/c-hCD3EDG/hDLL3 | 研发中 | |
T069569 | B6-hCD3EDG/hDLL3 | 研发中 |
文中提及的组织/细胞资源仅用于集萃ob电竞官网入口 相关服务项目,不单独出售;若有获取具体产品数据的需求,欢迎发送邮件至marketing@jssunup.com咨询!
参考资料
[1]Han, B., Zheng, R., Zeng, H., Wang, S., Sun, K., Chen, R., Li, L., Wei, W., & He, J. (2024). Cancer incidence and mortality in China, 2022. Journal of the National Cancer Center, 4(1), 47–53. //doi.org/10.1016/j.jncc.2024.01.006 [2]//www.cancer.org/cancer/types/lung-cancer/about/what-is.html [3]//www.lung.org/lung-health-diseases/lung-disease-lookup/lung-cancer/symptoms-diagnosis/lung-cancer-staging[4]//www.lungcancercenter.com/lung-cancer/stages/[5]//www.cancer.org/cancer/types/lung-cancer/treating-non-small-cell/targeted-therapies.html[6]Kwon, M., & Berns, A. (2013). Mouse models for Lung Cancer. Molecular Oncology, 7(2), 165–177. //doi.org/10.1016/j.molonc.2013.02.010 [7]Meuwissen, R., & Berns, A. (2005). Mouse models for human lung cancer. Genes & Development, 19(6), 643–664. //doi.org/10.1101/gad.1284505 [8]//www.lungcancercenter.com/treatment/[9]Morgan, K. M., Riedlinger, G. M., Rosenfeld, J., Ganesan, S., & Pine, S. R. (2017). Patient-derived xenograft models of non-small cell lung cancer and their potential utility in personalized medicine. Frontiers in Oncology, 7. //doi.org/10.3389/fonc.2017.00002 [10]Lallo, A., Schenk, M. W., Frese, K. K., Blackhall, F., & Dive, C. (2017). Circulating tumor cells and CDX models as a tool for preclinical drug development. Translational Lung Cancer Research, 6(4), 397–408. //doi.org/10.21037/tlcr.2017.08.01 [11]//www.merit.com/recognizing-lung-cancer-awareness-month/[12]Karachaliou, N., Mayo, C., Costa, C., Magrí, I., Gimenez-Capitan, A., Molina-Vila, M. A., & Rosell, R. (2013b). KRAS mutations in lung cancer. Clinical Lung Cancer, 14(3), 205–214. //doi.org/10.1016/j.cllc.2012.09.007 [13]Meuwissen, R., Linn, S. C., Linnoila, R. I., Zevenhoven, J., Mooi, W. J., & Berns, A. (2003). Induction of small cell lung cancer by somatic inactivation of both trp53 and RB1 in a conditional mouse model. Cancer Cell, 4(3), 181–189. //doi.org/10.1016/s1535-6108(03)00220-4